※本”納品レポートの見方”中のデータは一般的な納品例となっております。
お手元のレポートと一致しない場合もございますので、ご了承ください。

ORDER INFORMATION

            こちらの項目では、本案件で使用しましたライブラリ調製キット、シーケンサー機種をご案内しています。シーケンサー機種名につきまして、下記例では”illumine platform”との記載になっていますが、データ量保証のプランでWES解析をご依頼の場合、NovaSeq6000 および NovaSeq X plus シーケンサーを使用しての対応となります。

illumiina NovaSeq6000 Sequencing System
             https://jp.illumina.com/systems/sequencing-platforms/novaseq.html

 illumiina NovaSeq X plus Sequencing System
             https://jp.illumina.com/systems/sequencing-platforms/novaseq-x-plus.html

DELIVERABLES

Raw dataおよび解析結果のダウンロードリンクが記載されています。
Raw data(fastqファイル)は論文投稿時に行うデータベース登録時に、また、弊社でのデータ保管期間経過後に、追加データ解析をご希望の場合に必要なファイルです。

ダウンロードできる期間は約2週間となっておりますので、必ず期間中に全てのファイルをダウンロードして下さい。また、ダウンロードしたfastq.gzファイルはファイルに破損がないかの確認のため、必ず”md5sum値”の照合を行ってください。ご確認をお願いしております。
            確認、照合方法につきましては“CAUTION”をご確認ください。HDD納品対応の場合には、HDD内容について詳細記載があります。

ANALYSIS RESULT

例１
こちらの項目では得られたリードデータのリード数、GC%、Qualityの確認結果を記載しています。例1 Q20/Q30 scores of Raw data・Phredというプログラムで算出したQuality Score(QS) = Phredクオリティスコアベースコールにおけるエラー率の予測指標。Q20: PhredQSが20以上の塩基の割合Q30: PhredQSが30以上の塩基の割合※QSの詳細はResult File Descriptionにも記載があります。

例２　Quality by Cycle
FASTQCというプログラムで算出したQSを基に、Forward(read1)およびReverse(read2)について、リードの位置ごとのQSを図示しています。・縦軸：QS、横軸：リード上での位置、緑色領域：Good Quality、黄色領域：Acceptable Quality、赤色領域：Bad Quality を示しており、得られたリードを平均して評価した際に、どのQualityにあたるのか確認できます。

例１　Alignment Statistics
こちらの項目では得られたリードデータをリファレンス情報にマッピングし、マッピングの状況から算出致しました、depth 、 リード数、カバー率、リード長、一定数(1x, 10x, 20x, 30x, 以上のカバー率の領域の割合などのデータを記載しています。

例２　Alignment Coverage
Alignment解析により算出した領域ごとの depthおよび累積深度分布を図示しています。累積深度とは、ある深さ以上の対象領域が占める割合のことであり、Depth:80手前より 80% 以下と、割合が大きく低下していますので、例1 mean depth 77.9 と一致した形状となっています。“Show Description” をクリックできる場合、その部分をクリックすると、数値および名称につきまして詳細と凡例を確認できます。

例3 Insert StatisticsMapping
解析によりリードがマッピングされた領域を ” と定義し、Fragmentsize の分布を図示しております。Fragment平均長： 197 と算出され、波形データのピークの位置と一致しています。

こちらの項目では得られたリードデータをリファレンス情報にマッピングし、マッピングの状況から算出致しました、マッピングの状況から算出致しました。一塩基多型(SNP) 、 InDel 、ヘテロ/ホモの割合などのデータを記載しています。
例１　Variant Statistics

例２　Variant Statistics Diagram Mapping解析により検出した SNP 、 InDel につきまして、総数および内訳分類を円グラフで表示しています。“Show Description” をクリックできる場合、その部分をクリックすると、数値および名称につきまして詳細と凡例を確認できます。

DESCRIPTION

こちらの項目では、ライブラリ作製からシーケンス解析までを”Experimental”、得られたリードデータを基に実施したデータ解析を”Analysis”と分類し、各々のワークフローを簡単に記載しています。

例１　Experimental Overview

こちらの項目では、ライブラリ作製からシーケンス解析までを”Experimental”、得られたリードデータを基に実施したデータ解析を”Analysis”と分類し、各々のワークフローを簡単に記載しています。

例２　Whole genome resequencing analysis process

こちらの項目では、データ解析に使用しておりますプログラムおよびデータベースの、バージョン、パラメータなど詳細内容を記載しています。論文記載、Method作成の際にご参照ください。③Analysis Tools ④AnaysisDatabase本解析における用語の定義については後述の、“AnaysisDatabase”項目にて英文で詳細をまとめています。
例１　 Effect (Sequence Ontology)

”Column Description”として、SNP/InDel解析結果
Excel file (XXXX(Sample名)_chrX(染色体番号).xlsx)の各カラムについての詳細を記載しています。

• CHROM：染色体番号
• POS：位置
• REF：リファレンス上の塩基情報
• ALT：サンプルで変異が確認された塩基情報
• DP：変異があったアレル全体のリード数
• AD：変異があったリード数
  ※Allele Frequency(AF)の数値は ”AD/DP* で求めることができます。
• QUAL：REF/ALT多型が存在する確率をPhredでスケーリングした値。Phredスケール：-10*log(1-p)となります。こちらのスコアが10の場合：10分の1の確率でエラーがあることを示し、100の場合：10^10分の1の確率であることを示します。
• MQ：Mapping Quality
• Zygosity：Homo/Hetero
• FILTER：下記条件でフィルター設定し、条件分けしています
  (例2)。該当の位置ですべてのフィルターを通過した場合はPASS記載となります。フィルタに合格していない場合、失敗したフィルタのコードがセミコロンで区切られた形式で記載となります。

例2 フィルター設定の詳細

• Effect：Sequence Ontologyの用語を用いたアノテーション結果。複数の結果の場合、‘&’で連結して表記しています。
• Putative_Impact：推定される影響度/削除度。”HIGH, MODERATE, LOW, MODIFIER”として簡易推定結果を記載しています。
• Gene_Name：一般的な遺伝子名(HUGO Gene Nomenclature Committee：HGNC基準)。遺伝子間に位置する変異の場合、最も近い遺伝子を記載しています。
• Feature_Type：転写物、モチーフ、miRNAなど特定領域の特徴を記載しています。
• Feature_ID：Transcript ID、Motif ID、miRNA、ChipSeqピーク、Histone markなど、ID登録されている場合、そのIDを記載しています。
• Transcript_BioType：ENSEMBL biotypes、Coding、Noncodingについて記載しています。
• Rank/Total：エクソンまたはイントロンのランク/エクソンまたはイントロンの総数。
• HGVS.c：HGVS表記による変異(DNAレベル)
• HGVS.p：HGVS表記による変異(アミノ酸レベル)

上記以外の項目につきましては、”Column Description”をご確認ください。

例３　 SNP/InDel解析結果Excel file

こちらの項目では、納品しておりますFileの種類・形式につきまして詳細を記載しています。

例1 Deliverables List

CAUTION

納品物につきまして

弊社html形式のレポートサイトの、DELIVERABLESの頁にRaw dataおよび解析結果のダウンロードリンクがあります。
Raw dataはデータベース登録時や、弊社でのデータ保管期間経過後に、追加データ解析をご希望の場合に必要なファイルとなります。
ダウンロードできる期間は約2週間となっておりますので、必ず全てのファイルをダウンロード頂きますよう、宜しくお願い致します。なお、2週間経過後も3ヵ月はデータを保管しておりますので、再度ダウンロードが必要な場合はngs@macrogen-japan.co.jpまでご連絡ください。

md5sum値の確認

ダウンロードしたFastq.gzファイルもしくはHDD内のFastq.gzファイルは、ファイルの解凍前に”md5sum値”のご確認くだい。
”QuickHash-GUI”という、フリーのアプリケーションもございます。https://www.quickhash-gui.org/downloads/
もしお手持ちのソフトウェアが無ければこちらをご取得下さい。

QuickHash-GUIでのmd5sum値の確認方法は下記となります。
“QuickHash-GUI.exe”アプリケーションを起動します(例1)。
①“FileS”タブをクリックし、
②“Algorithm”、”MD5”を選択してください。md5sum値を確認したいfastqファイルが入っているフォルダを
③“Select Directory” から選択していただきますと、自動的に解析が進行致します。

出力は、csvファイルまたはtxtファイルとして保存することができます。
使用するシステムの性能により、処理に時間がかかる場合がございます。表示された数字と、レポートに記載のmd5sum値の一致を確認できましたら作業完了となります。あわせてQuickHash-GUIのユーザーマニュアルもご確認ください(例2)。

例１　QuickHash-GUI起動画面

例２　QuickHash-GUIfile中身

※本”納品レポートの見方”中のデータは一般的な納品例となっております。
お手元のレポートと一致しない場合もございますので、ご了承ください。

Experimental / Analysis Methods and Workflow

こちらの項目では、ライブラリ作製からシーケンス解析までを”Experimental” 、得られたリードデータを基に実施したデータ解析を”Analysis”と分類し、各々のワークフローを簡単に記載しています。

例1 RNA Sequencing Experiment Workflow

例2 Analysis Workflow

Summary of Data Production

こちらの項目では得られたリードデータのリード数、GC%、Qualityの確認結果を記載しています。

例1 Raw data stats
・Phredというプログラムで算出したQuality Score(QS)
= Phredクオリティスコアベースコールにおけるエラー率の予測指標
Q20: Phred QSが20以上の塩基の割合
Q30: Phred QSが30以上の塩基の割合
※QSの詳細は9. Appendixにも記載があります。

例2 Read quality at each cycle of sample
FASTQCで算出したQSを基に、Forward(read1)およびReverse(read2)について、リードの位置ごとのQSを図示しています。
・縦軸：QS、横軸：リード上での位置
緑色領域：Good Quality、黄色領域：Acceptable Quality、
赤色領域：Bad Quality を示しており、得られたリードを平均して評価した際に、どのQualityにあたるのか確認できます。

例2 Read quality at each cycle of sample
FASTQCで算出したQSを基に、Forward(read1)およびReverse(read2)について、リードの位置ごとのQSを図示しています。
・縦軸：QS、横軸：リード上での位置
緑色領域：Good Quality、黄色領域：Acceptable Quality、
赤色領域：Bad Quality を示しており、得られたリードを平均して評価した際に、どのQualityにあたるのか確認できます。

Reference Mapping and Assembly Results

こちらの項目では得られたリードデータをリファレンス情報にマッピングし、マッピングの状況から算出した、既知転写産物および遺伝子の発現量のリストおよび新規転写産物として予測した転写産物の発現量算出結果リストを確認できます。

例1 Known transcripts Expression Level
リードカウント、Transcript Length および発現量など、得られた情報をまとめた一覧をExcel 形式でまとめています。こちらのリストは
Result_RNASeq_Excel フォルダ内の
Expression_profileに以下名称にて保管されています。
・Expression_Profile.GRCh38.transcript.xlsx
・Expression_Profile.GRCh38.genes.xlsx

例2 新規転写産物の分類
図示されておりますSplicingパターンの取り方を基に、
計13パターンに分けて評価分類しています。

例3 Novel Transcript list
例2での分類結果、リードカウント、Exon数および発現量など、本解析で得られた情報をExcel形式にまとめています。
ファイルはResult_RNASeq_Excelフォルダ内の
Novel Transcript Analysisに以下名称にて保管されています。

• Expression_Profile_with_Novel.GRCh38.transcript.xlsx

※こちらは転写産物のリストとなります。

• Expression_Profile_with_Novel.GRCh38.genes.xlsx

※こちらは遺伝子でのリストとなります。

Differentially Expressed Gene Analysis Results

こちらの項目の解析結果の内容は
「Result_RNASeq_Excel 」「 DEG_Result 」に格納されている、 レポートファイル“Analysis_Result.html”にまとめています。
こちらのレポートファイルと併せてご確認ください(例 1) 。

以下6 項目に関してこれ以降でご案内します。
①遺伝子のフィルタリング
②各サンプルの相関関係の把握
③発現変動遺伝子の分布状況の確認
④Heatmap Analysis
⑤GO Enrichiment Analysis
⑥KEGG Enrichiment Analysis　
※解析希望時のみ、有償オプション。

例1 Analysis_Result.html について

例2 Expression Profile.GRCh38.gene.xlsx
データ解析で使用しております数値データのRaw data は以下の名称でフォルダに格納されています。
・Raw data : Expression Profile.GRCh38.gene.xlsx
※ “result_RNAseq_excel” 内の ”Expression Profile”フォルダに格納。
・Normalization 後の Raw data : data2.xlsx
・FC 値、 P 値を加味した統計データ : data3_fc2_&_raw.p.xlsx

全比較内容のうち少なくとも1 つにおいて、｜fc｜≧ 2 、raw.p < 0.05 の条件を満たす遺伝子をフィルタリングした結果をまとめたものが、”data3_fc2_&_raw.p.xlsx “となります。

例3 data3_fc2_&_raw.p.xlsx

全比較内容のうち少なくとも1 つにおいて、｜fc｜≧ 2 、raw.p < 0.05 の条件を満たす遺伝子をフィルタリングした結果をまとめたものが、”data3_fc2_&_raw.p.xlsx “となります。

【カラム項目詳細 】

• A 列： Gene ID
• B 列： Transcript ID
• C 列： Gene Symbol
• D 列： データベース記載の遺伝子説明
• E 列： 遺伝子の分類
• F 列： Protein ID
• G 列： HGNC(HUGO Gene Nomenclature Committee) ID
• H 列： MIM(Mendelian Inheritance in Man) ID
• I 列： Ensembl ID
• J 列： IMGT/GENE DB ID
• K 列： Test/Control での Fold Change(FC) 値
• L 列： Test/Control での log Counts per Million reads (CPM) 値
• M 列： Test/Control での P 値
• N 列： Test/Control での FDR correction P 値

OーX 列につきましては、各サンプルごとの平均値、 raw signa の TMM 補正値、リードカウント、FPKM 値、 TPM 値を記載しています。
※詳細は“ Analysis_Result.html”“ III-5. Column Information ”にございます。
こちらのExcel ファイルに GO Enrichiment Analysis 、 KEGG Enrichiment Analysis ※オプション の結果も別シートで記載していますので、あわせてご確認ください。

例1 Distribution of genes with various number of zero counts

いずれかのサンプルでリードカウントが0となった遺伝子を解析対象から外すゼロカウントフィルタリングを行います。図ではサンプルデータごとにリードカウント=0の遺伝子をフィルタリングし、サンプル数を跨いで0となる遺伝子数を表示しています。全てのサンプルで発現している遺伝子のみ(青Box)、以降の解析では使用しています。
※Raw dataのExcelにはリードカウントが0の遺伝子も記載しています。

ご希望いただいた場合、0カウントフィルタリングの条件を変更して、再解析も可能ですので、ご希望の場合は担当者にご連絡ください。

例2 Whole genome resequencing analysis process
リードカウントを基にTest/Controlで計算しFold change(FC)を算出。あわせてp値も算出し、|FC|≧2かつp値 < 0.05の遺伝子をフィルタリングしています。
(フィルタリングされる遺伝子数が極端に少ない場合は|FC|≧1.5にて、フィルタリングを行う場合もあります。)

例2 Whole genome resequencing analysis process

リードカウントを基にTest/Controlで計算しFold change(FC)を算出。あわせてp値も算出し、|FC|≧2かつp値 < 0.05の遺伝子をフィルタリングしています。
(フィルタリングされる遺伝子数が極端に少ない場合は|FC|≧1.5にて、フィルタリングを行う場合もあります。)

各サンプルの相関関係を複数の図表で表しています。

例1Correlation Matrix for All Samples
サンプルデータごとにピアソンの積率相関係数をとり、ヒートマップ化しています。

例2 Hierarchical Clustering Analysis
サンプルデータごとのノーマライズ値を元に、発現の類似性を階層的に表しています。

例3 Multidimensional Scaling Analysis
二次元プロットにより、発現量のばらつきとサンプルとの相関を表しています。

|FC|≧2かつp値 < 0.05の遺伝子に対して各種Plotを作図しています。

例1 Volcano Plot between TEST vs CTRL
縦軸をp値の対数、横軸をFC値の対数として分布図化することで、|FC|≧2かつp値 < 0.05の遺伝子の(青色(－), 黄色(＋))の分布を表しています。
※n≧2の際に作成されます。

例2 MA Polt between TEST vs CTRL
縦軸をFC値の対数、横軸を発現量の相乗平均
として分布図化することで、
|FC|≧2かつp値 < 0.05の遺伝子(水色、青色)の分布を表しています。
※解析結果によっては|FC|≧2が条件でない場合もございます。

例1 Heatmap
|FC|≧2かつp値 < 0.05の遺伝子に対してあわせてノーマライズしたすべてのサンプル及び各比較パターンごとにHeatmapを作成しています。

Gene Ontology(http://geneontology.org/) database登録情報より、発現量変動が大きかった遺伝子がBiological Prosess (BP), Cellular Component (CC), Moleculer Function (MF)の3つの観点からどのような機能グループ(GO term)に属するかを分類し、発現量変動の大きかったGO termの一覧表及びPlotを作成しています。

例1 Biological ProcessにおけるGO解析結果
検定によるp値< 0.05, 0.01, 0.001における、上位20位までの遺伝子をグラフ化しています。

• 縦軸：遺伝子系統名
• 横軸：全体の遺伝子数における該当遺伝子数の割合
• ●：遺伝子数の割合
• カラーバー：p値

「result_RNAseq_excel」→「DEG_result」→「gprofiler」内に各種Plotが格納されてます。比較パターンごとのフォルダ内には“gprofiler.bar.png”および“gprofiler.png”がありますが、同一内容の図表の表示の仕方を棒グラフ(.bar.png)とドットプロット(.png)で表しています。例１はドットプロットでの図表となります。

【sizefilt.png につきまして 】
格納されております“gprofiler.sizefilt.png” は、p-value が 0.05 未満かつ term_size が 10~500 のもののみから作成された Plot になります。

GO termは term size( その term に含まれる遺伝子数)が様々です。非常に大きいまたは小さいGO term は、計算方法によっては、統計的有意性が大きく算出されることがあります。そのため、通常の解析結果と合わせて、term size が 10-500 にフィルタリングして、別途作成した Plot も納品しています。

例2 GO_statSheet
データ解析で使用しております数値データのRaw data は
以下の内容で“data3_fc2_&_raw.p.xlsx” に記載しています 。
・GO_stats
・GO_genes

KEGG(https://www.genome.jp/kegg/kegg_ja.html)というdatabaseの情報に、各比較パターンでの発現量変動を当てはめることで、各Pathway 上でどのような遺伝子に有意な変化があったかを図示しています。

例1 Description of KEGG pathway map frame

各Pathwayで有意差のあった遺伝子の発現量比を8.のような色分けでPathwayマップ図内に表しています。
また、各pathwayで重要なモジュールには★マークを付けています。
※Pathwayマップは KEGG データベースに登録の情報を使用しているため、お客様の希望に合わせての作図・改定の対応は致しかねます。

例2 KEGG_stat Sheet
データ解析で使用しております数値データのRaw data は
以下の内容で“data3_fc2_&_raw.p.xlsx” に記載しています 。
・GO_stats
・GO_genes

SNP and Indel Discovery
※有償オプション。生物種によっては対応できないため事前にご相談ください。

シーケンス結果をリファレンス情報にマッピング、SNV calling 後、Annotationを付与した結果を納品します。
解析結果は“SNV_Call サンプル名.xlsx”の Excel 形式にて格納されています。

例1 SNV 納品結果例

各項目の詳細につきまして、PDF ファイルにまとめがあります。
以下で示しておりますリンクが納品物 PDF にありますので、こちらよりご取得・ご確認ください。

Fusion Gene Prediction Results
※有償オプション。生物種によっては対応できないため事前にご相談ください。

以下３種類のProgramを使用した予測結果を納品しています。

● Defuse program
Defuseprogramを使用し、マッピング状況から2遺伝子間を跨ぐリードを抽出し、融合遺伝子を予測します。
※左上の図はExcel形式での納品例。

● Fusion Catcher
Fusion Catcherを使用し、Mapping状況から既知融合遺伝子であるか否か、また、転座、キメラかを予測します。
                ※右上の図はExcel形式での納品例。

● Arriba
Arribaを使用し、 STAR aligner でのマッピング状況から融合遺伝子を予測、および融合までの動態を図示しています。
※Arribaが使用できるのは human のみとなります。
※PDFファイル、 Excel 形式での納品。

1. 融合遺伝子形成までの模式図
   ※染色体情報、 Coverage, 、転写様式、配列、BreakPointの内容が確認できます。
2. Circos Plot
   ※各染色体ごとに 全 ゲノム情報を環状に表記し、融合している部位を線つなぎで表示しています。
3. 予測融合遺伝子のドメイン構造の模式図
   ※Excel形式での納品例(例4) 。

例3 Arriba による解析結果

例4

Data Download Information

Raw dataおよび解析結果のダウンロードリンクが記載されています。
Raw data(fastqファイル)は論文投稿時に行うデータベース登録時に、また、弊社でのデータ保管期間経過後に、追加データ解析をご希望の場合に必要なファイルです。
ダウンロードできる期間は約2週間となっておりますので、必ず期間中に全てのファイルをダウンロードして下さい。また、ダウンロードしたfastq.gzファイルはファイルに破損がないかの確認のため、必ず”md5sum値”の照合を行ってください。ご確認をお願いしております。
確認、照合方法につきましては”CAUTION”をご確認ください。

CAUTION

納品物につきまして

弊社pdf 形式のレポートファイルの、 Data Download Information の頁にRaw dataおよび解析結果のダウンロードリンクがあります。

Raw dataはデータベース登録時や、弊社でのデータ保管期間経過後に、追加データ解析をご希望の場合に必要なファイルとなります。

ダウンロードできる期間は約2週間となっておりますので、必ず全てのファイルをダウンロード頂きますよう、宜しくお願い致します。なお、2週間経過後も3ヵ月はデータを保管しておりますので、再度ダウンロードが必要な場合はngs@macrogen-japan.co.jpまでご連絡ください。

md5sum値の確認

ダウンロードしたFastq.gzファイルもしくはHDD内のFastq.gzファイルは、ファイルの解凍前に”md5sum値”のご確認くだい。
”QuickHash-GUI”という、フリーのアプリケーションもございます。https://www.quickhash-gui.org/downloads/
もしお手持ちのソフトウェアが無ければこちらをご取得下さい。

QuickHash-GUIでのmd5sum値の確認方法は下記となります。

“QuickHash-GUI.exe”アプリケーションを起動します(例1)。
①“FileS”タブをクリックし、
②“Algorithm”、”MD5”を選択してください。md5sum値を確認したいfastqファイルが入っているフォルダを
③“Select Directory” から選択していただきますと、自動的に解析が進行致します。

出力は、csvファイルまたはtxtファイルとして保存することができます。
使用するシステムの性能により、処理に時間がかかる場合がございます。表示された数字と、レポートに記載のmd5sum値の一致を確認できましたら作業完了となります。あわせてQuickHash-GUIのユーザーマニュアルもご確認ください(例2)。

例１　QuickHash-GUI起動画面

例２　QuickHash-GUIfile中身

※本”納品レポートの見方”中のデータは一般的な納品例となっております。
お手元のレポートと一致しない場合もございますので、ご了承ください。

Raw_dataフォルダ内の report.html が Raw Data に関する報告書です。
Order情報や得られた Raw Data に関する情報、 fastq ファイルのダウンロードリンクが含まれます。

ORDER INFORMATION

本案件で使用したライブラリ調製キット、シーケンサーを記載しています。シーケンサー機種名について、下記例では“illumine system”と記載がありますが、通常弊社でOTU 解析をご依頼の場合、 MiSeq シーケンサーを使用しており、レポートではType of ReadはPaired-end 、 Read Length は301と表記されます。

illumiina MiSeq System
https://jp.illumina.com/systems/sequencing platforms/miseq.html

【Order Informationの例】
レポート左部のOrder No をクリックすると、Order Informationが表示されます。

RAW DATA RESULTS

得られたリードのリード数、GC ％、 Quality を記載しています。

例1 Raw Data Statistics
Phredというプログラムで算出した Quality Score(QS)
=Phredクオリティスコアベースコールにおけるエラー率の予測指標
Q20(%)：Phred QSが20以上の塩基の割合
Q30(%)：Phred QSが30以上の塩基の割合
※QSの詳細は Appendix の Result File Description にも記載があります。

例2 Quality by Cycle
FASTQCというプログラムで算出した QS を基に、Forward(read1)および Reverse(read2) について、リードの位置ごとの QS を図示しています。
緑色領域：Good Quality 、黄色領域： Acceptable Quality 、赤色領域： Bad Quality を示しており、
得られたリードを平均して評価した際に、どのQuality にあたるのか確認できます。
縦軸：QS　横軸：リード上での位置

例2 Quality by Cycle
FASTQCというプログラムで算出した QS を基に、Forward(read1)および Reverse(read2) について、リードの位置ごとの QS を図示しています。
緑色領域：Good Quality 、黄色領域： Acceptable Quality 、赤色領域： Bad Quality を示しており、
得られたリードを平均して評価した際に、どのQuality にあたるのか確認できます。
縦軸：QS　横軸：リード上での位置

DELIVERABLES

Raw dataは論文投稿時に行うデータベース登録時に、また、弊社でのデータ保管期間経過後に、追加データ解析をご希望の場合に必要なファイルです。
ダウンロードできる期間は約2週間となっておりますので、必ず期間中に全てのファイルをダウンロードして下さい。
また、ダウンロードしたfastq.gz ファイルはファイルに破損がないかの確認のため、必ず”md5sum 値”の照合を行ってください。
確認、照合方法につきましては末尾”CAUTION” をご確認ください。

【fastqファイルダウンロードページの例】
ファイル名をクリックすると、ダウンロードが開始されます。

「受託番号_OTU 」フォルダ内の OTUanalysis.html が OTU 解析に関する報告書です。解析のフロー、解析結果の生データや図表をまとめています。

OTUanalysis.htmlの例

ANALYSIS PROCEDURE

解析全体の流れを記載しています。
「MANUAL Download 」をクリックすると、解析の詳細をまとめた pdf ファイル（ NGS Analysis Manual OTU ）をダウンロードできます。
あわせてご確認ください。

【NGS Analysis Manual OTU の内容】

• 解析フロー
• リードの前処理方法
• 使用したソフトウェア
• 使用した配列データベース
• 結果図表の詳細な説明

など

【NGS Analysis Manual OTU の記載例】
左図：PCoA 結果の説明
下図：使用したソフトウェアの説明

RESULTS OF ANALYSIS

ペアリード連結後のリード数とリードQuality を記載しています。以降の解析にはこちらのリードを使用しています。

解析前処理（低Qualityリード、キメラリード除去）後のリード数を記載しています。こちらのリードを基に、OTU(operatiomal taxonomic unit)の分類を行います。配列の類似性が97% 以上の配列を１つの OTU として定義します。

サンプル毎の群集組成を棒グラフ、または面グラフで示しています。グラフにマウスオーバーすることで、その分類群が占める割合（％）が表示されます。

【群集組成（属レベル）を棒グラフで表示した例】
x 軸：サンプル名　　y軸： OTU の割合

各OTU の代表配列や、棒グラフ・面グラフの作図に使用された生データ（リード数、分類群毎のリード数情報）をダウンロードできます。

サンプル毎のα多様性（OTU数、多様度指数）を記載しています。
※α多様性：ある１つのサンプルの多様性
※β多様性：サンプル間の多様性（類似性・非類似性）

Chao1：種の豊富度を表す指数
Shannon：種の豊富度と均等度を表す指数
　　　　　(希少な種に重みがつけられている)
Simpson：種の豊富度と均等度を表す指数
　　　　　(主要な種に重みがつけれられいる)
Goods Coverage：今回のシーケンスでどの程度のOTUを検出できたかを表す指数

【Community richness & diversityの結果例】
x軸：サンプル名
y軸：α多様性

Rarefaction curveは、解析に使用したリード数がOTU解析に十分であったかを示します。グラフがプラトーに達していない場合は、リード数を増やすことでより多くのOTUを検出できる可能性があります。

Rarefaction curveに使用されるデータ例

【Rarefaction curveの例】
x軸：リード数　　y軸： OTU

PCoAはサンプル間の類似度（非類似度）を視覚化するものです。群集構造が類似しているサンプル同士は近くに、そうでないものは離れてプロットされます。2D、3D 、Parallelの3 種類を作成しており、作図に使用された数値は PC value[html]から取得できます。

【PCoAの結果例(2D)】
各軸には寄与率が与えられ、情報量の何％をその軸で説明できるかを表します。例では、サンプル間の群集構造の違いを数値化した、Unifrac distanceを解析に使用しています。グループ情報を指定した場合、グループごとに色分されたプロットが出力されます。

【PCoAの結果例(Parallel)】
複数のPC軸を平行に置き、各軸ごとのPC値(座標)を同じサンプル同士で繋いて表示しています。

【PCoAの結果例(3D)】
画面右のメニューから、作図の設定を変更できます。
Colors：プロットの色変更
Visibility：プロットの透過度の変更
Scaling：プロットサイズの変更
Labels：サンプル名の表示切替
Axes：作図に使用する軸の選択
Options：軸の色変更、ファイル出力

サンプル間の類似度(非類似度)を視覚化するために、階層的クラスタリング解析を行った結果です。群集構造が近いサンプル同士でクラスタリングされます。

【UPGMAの結果例】
例では、サンプル間の群集構造の違いを数値化した、Unifrac distanceを解析に使用しています。

PROGRAM

Assembly - FLASH(1.2.11)
Preprocessing & Clustering - CD-HIT-OTU
Taxonomy & Diversity analysis - QIIME1.9

「MANUAL Download 」からダウンロード可能な pdf ファイル（ NGS Analysis Manual OTU ）に
ソフトウェアの詳細を記載しています。あわせてご確認ください。
※pdfファイルの取得方法は本資料のこちらをご確認ください。

CAUTION

納品物につきまして

「Raw_data 」フォルダ内の report.html が Raw Data に関する報告書です。
報告書の左側のメニューより、リードクオリティの確認、Raw Data(fastqファイル)のダウンロードが可能です。

OTU解析結果は「受託番号 _OTU」フォルダからご確認ください。
Raw data（fastqファイル）は論文投稿時に行うデータベース登録時に、
また、弊社でのデータ保管期間経過後に、追加データ解析をご希望の場合に必要なファイルです。

ダウンロードできる期間は約2週間となっておりますので、必ず期間中に全てのファイルをダウンロードして下さい。
なお、2 週間経過後も 3 ヵ月はデータを保管しておりますので、再度ダウンロードが必要な場合はngs@macrogen-japan.co.jp までご連絡ください。

md5sum値の確認

ダウンロードしたFastq.gzファイルもしくはHDD内のFastq.gzファイルは、ファイルの解凍前に”md5sum値”のご確認くだい。
”QuickHash-GUI”という、フリーのアプリケーションもございます。https://www.quickhash-gui.org/downloads/
もしお手持ちのソフトウェアが無ければこちらをご取得下さい。

QuickHash-GUIでのmd5sum値の確認方法は下記となります。

“QuickHash-GUI.exe”アプリケーションを起動します(例1)。
①“FileS”タブをクリックし、
②“Algorithm”、”MD5”を選択してください。md5sum値を確認したいfastqファイルが入っているフォルダを
③“Select Directory” から選択していただきますと、自動的に解析が進行致します。

出力は、csvファイルまたはtxtファイルとして保存することができます。
使用するシステムの性能により、処理に時間がかかる場合がございます。表示された数字と、レポートに記載のmd5sum値の一致を確認できましたら作業完了となります。あわせてQuickHash-GUIのユーザーマニュアルもご確認ください(例2)。

例１　QuickHash-GUI起動画面

例２　QuickHash-GUIfile中身